WWW.METODICHKA.X-PDF.RU
БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА - Методические указания, пособия
 
Загрузка...

Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |

«ОТБОР ПРОБ НА МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ ИЗ ПРИРОДНОЙ И ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ СРЕД ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ СТУДЕНТОВ Учебно-методическое пособие для студентов, обучающихся по ...»

-- [ Страница 1 ] --

МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РФ

АСТРАХАНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ

ОТБОР ПРОБ НА МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ

ИССЛЕДОВАНИЯ ИЗ ПРИРОДНОЙ

И ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ СРЕД

ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ



СТУДЕНТОВ

Учебно-методическое пособие для студентов, обучающихся по направлениям 020400.68 – Биология;

06.03.01 – Биология;

021900.62 – Почвоведение

Составители:

Ю.В. Батаева, И.С. Дзержинская Издательский дом «Астраханский университет»

УДК 57+631.4 ББК 28.0;40.3 Б28 Рекомендовано к печати редакционно-издательским советом Астраханского государственного университета

Рецензенты:

кандидат биологических наук, доцент В.Е. Афанасьев (Астраханский государственный технический университет);

кандидат биологических наук, доцент Н.А. Ломтева (Астраханский государственный университет) Отбор проб на микробиологические исследования из природной и производственной сред для самостоятельной работы студентов : учебно-методическое пособие / сост.: Ю. В. Батаева, И. С. Дзержинская. – Астрахань : Астраханский государственный университет, Издательский дом «Астраханский университет», 2015. – 132 с.

Представлены основные методы для проведения отбора проб на микробиологический анализ из природной и производственной сред для студентов магистратуры и бакалавриата направлений 020400.68 «Биология», 06.03.01 «Биология» и 021900.62 «Почвоведение». Описаны методы отбора проб воздуха, воды, донных отложений, почвы, микроводорослей и фототрофных бактерий, перифитона, зоопланктона, простейших, прибрежноводной растительности, отбор проб для учета ризосферной, корневой микрофлоры, клубеньковых бактерий и микоризы, растений для установления микробной природы заболевания, микроскопических грибов и дрожжевых анаморфов, отбор проб при проведении микробиологического мониторинга производственной среды.

ISBN 978-5-9926-0835-9 © Астраханский государственный университет, Издательский дом «Астраханский университет», 2015 © Ю. В. Батаева, И. С. Дзержинская, составление, 2015

СОДЕРЖАНИЕ

Методы отбора проб на микробиологический анализ из природной и производственной сред

1. Методы отбора проб воздуха

1.1. Общие положения

1.2. Оборудование для отбора проб воздуха

1.3. Объем пробы воздуха

1.4. Этикетирование проб

2. Методы отбора проб воды

2.1. Общие положения

2.1.1. Выбор места (станции) отбора проб

2.1.2. Оборудование для отбора проб воды

2.1.3. Объем пробы воды

2.1.4. Этикетирование проб

2.2. Отбор проб для микробиологического исследования воды рыбоводных прудов

2.3. Отбор проб для санитарно-бактериологического анализа питьевой воды

2.4. Отбор проб для полевого санитарномикробиологического анализа

2.5. Отбор проб (кернов) морского, ледникового льда, льда водоемов и атмосферных осадков

2.6. Отбор проб донных отложений

2.6.1. Оборудование для отбора проб донных отложений

3. Методы отбора проб почвы

3.1. Общие положения

3.1.1. Оборудование для отбора проб почвы

3.1.2. Этикетирование проб

3.2. Отбор проб для санитарно-микробиологического анализа.................. 39

3.3. Отбор проб загрязненных почв

3.4. Отбор проб силикатных бактерий

4. Отбор проб при проведении микробиологического мониторинга производственной среды

4.1. Общие положения

4.1.1.Выбор точек отбора проб

4.1.2. Частота и время отбора проб

4.2. Отбор проб воздуха

4.3. Отбор проб с рабочих поверхностей и кожи рук

4.4. Отбор проб с одежды и перчаток персонала

4.5. Отбор проб биологических образцов

4.6. Отбор проб пищевых продуктов

5. Отбор проб микроводорослей и фототрофных бактерий

5.1. Отбор проб фитопланктона

5.1.1. Общие положения

5.1.2. Оборудование для отбора проб

5.1.3. Фиксирование проб





5.1.4. Этикетирование проб

5.1.5. Концентрирование количественных проб

5.2. Отбор проб почвенных водорослей

5.2.1. Общие положения

5.2.2. Отбор проб для качественного анализа

5.2.3. Отбор проб для количественного учета

5.2.4. Фиксирование проб

5.3. Отбор проб фототрофных бактерий

6. Отбор проб перифитона

6.1. Общие положения

6.2. Отбор проб с естественных субстратов

6.3. Этикетирование проб

6.4. Отбор проб с искусственных субстратов

7. Отбор проб зоопланктона

7.1. Общие положения

7.2. Оборудование для отбора проб

7.3. Фиксирование и этикетирование проб

8. Отбор проб простейших

8.1. Отбор пробы и подготовка ее к анализу микрозоопланктона.............. 84

8.2. Отбор проб почвенных простейших

9. Отбор проб для учета ризосферной, корневой (ризоплан) микрофлоры, клубеньковых бактерий и микоризы

9.1. Общие положения

9.2. Отбор образцов ризосферной почвы

9.3. Отбор проб для учета ризосферной и корневой микрофлоры (ризоплан)

9.4. Выделение клубеньковых бактерий

9.5. Отбор проб микоризы

9.6. Этикетирование проб

10. Отбор проб растений для установления микробной природы заболевания

10.1. Общие положения

10.2. Отбор образцов растений

10.3. Этикетирование проб

10.4. Отбор проб почвы внутри очага поражения

10.5. Отбор кусочков пораженных тканей для микроскопирования......... 101

10.6. Отбор проб из больных частей растений для выделения возбудителей заболевания

10.7. Отбор проб для выделения продуцента пектолитических ферментов

11. Отбор проб прибрежно-водной растительности

11.1. Общие положения

11.2. Инструменты для качественного сбора

11.3. Инструменты и приборы для количественного сбора

12. Особенности отбора проб микроскопических грибов и дрожжевых анаморфов

12.1. Отбор проб микромицетов

12.1.1. Общие положения

12.1.2. Метод водных смывов

12.1.3. Методы приманок

12.1.4. Метод «ловчих растений» для выделения фитопатогенных грибов

12.1.5. Метод накопительной культуры

12.1.6. Метод выделения микромицетов из внутренних тканей растений

12.2. Отбор проб дрожжей

Требования безопасности при отборе проб

Библиографический список

Приложения

МЕТОДЫ ОТБОРА ПРОБ

НА МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ

ИЗ ПРИРОДНОЙ И ПРОИЗВОДСТВЕННОЙ СРЕД

Для изучения видового разнообразия и количественных характеристик микробных популяций и сообществ в окружающей и производственной среде применяют комплекс методов, среди которых первым и наиболее важным является отбор проб. Достоверность результатов исследования напрямую зависит от соблюдения правил отбора проб: выбора мест или станций отбора, применение специального стерильного оборудования, отбор определенного объема образцов и их обработка, этикетирование, транспортировка и хранение.

При изучении микроорганизмов в природных образцах репрезентативные части образца анализируют и результаты проецируют на сообщество в целом или экосистему. Термин «репрезентативный» означает, что проба должна отражать разнообразие и плотность организмов общего местообитания (Нетрусов и др., 2006). Во многих местообитаниях распределение микроорганизмов не гомогенное, а кластерное. Поэтому любая взятая проба, несомненно, точечная по отношению к изучаемому местообитанию может привести к неверной экстраполяции результатов. Обработка сложных проб, приготовленных из собранных индивидуальных проб с использованием специальных смесителей, может минимизировать ошибку. Уровень достоверности при экстраполяции данных соответствующих проб на всю эконишу должен быть подкреплен статистическим анализом.

1. МЕТОДЫ ОТБОРА ПРОБ ВОЗДУХА

1.1. Общие положения Атмосферный воздух и воздух закрытых помещений значительно различаются по количественному и качественному составу микроорганизмов. Бактериальная обсемененность жилых помещений выше плотности бактерий в атмосферном воздухе, в том числе и патогенными видами, попадающими в воздух от больных людей и животных (капельным путем в составе аэрозоля, образующегося при разговоре, кашле, чихании, со слущивающимся эпителием кожных и шерстных покровов, с пылью загрязненного постельного белья и зараженной почвы).

Микрофлора воздуха формируется в основном за счет почвенных микроорганизмов, отличающихся большой устойчивостью к неблагоприятным факторам внешней среды, таким, как высушивание, ультрафиолетовые лучи солнечного света, колебания температуры и пр. Обычно из воздуха выделяют представителей рода Micrococcus, Bacillus subtilis, В. cеrеus var. mycoides, В. mesentericus, различные виды Actinomyces, Penicillium, Aspergillus, Mucor и др.

Отбор проб воздуха необходимо проводить с применением аппаратов, которые минимально травмируют живые клетки микроорганизмов, находящиеся обычно в мельчайших капельках аэрозолей.

Пассивная седиментация (метод Коха) основана на оседании бактериальных частиц и капель под действием силы тяжести на поверхности питательной среды открытой чашки Петри. Метод пригоден для подсчета количества спор грибов, но не для количественного учета находящихся в воздухе бактерий. С его помощью определяется всего лишь 35–60 % микроорганизмов в воздухе. Обычно производят перерасчет по Омелянскому: на поверхность 100 см2 плотной среды оседает за 5 мин. такое количество бактерий, которое содержится в 10 л воздуха. Однако позднее было определено, что эти показатели занижены в 3 раза. Метод не точен и абсолютно не пригоден для атмосферного воздуха, где имеют место большие колебания в скорости его движения.

Он может быть использован в тех случаях, когда отсутствуют более совершенные приборы или нет электроэнергии.

Для выбора приемлемого метода активного отбора проб следует учитывать следующие факторы:

ожидаемая концентрация КОЕ в воздушной среде;

способность метода работать в условиях низкой концентрации КОЕ;

чувствительность бактерий к процедуре пробоотбора;

время и продолжительность отбора проб;

возможность деконтаминации прибора.

1.2. Оборудование для отбора проб воздуха Чаще всего пробы воздуха отбирают, пропуская определенный его объем через бактериальные фильтры, размер пор которых можно варьировать для дифференциации микроорганизмов воздуха по размеру.

Фильтрационный метод (воздух продувается через жидкость) – основан на улавливании бактерий в жидкости, которая затем может быть использована для посева на различные среды — прибор Дьяконова (1925) (рис. 1). Длительность протягивания воздуха через поглотитель определяется скоростью его протекания через прибор, предполагаемым количеством микробов, находящихся в воздухе, и тем объемом жидкости, которая улавливает микрофлору.

Методы, основанные на осаждении микробных аэрозолей паром или распыленной жидкостью, – прибор Речменского (рис. 2).

–  –  –

Методы, основанные на принципе ударно-прибивного действия воздушной струи с использованием специальных приборов, например прибора Кротова (1951) (рис. 3) и «Флора-100».

Рис. 3. Аппарат Кротова: 1 – цилиндрический корпус; 2 – основание корпуса; 3 – электромотор; 4 – центробежный вентилятор;

5 – восьмилопастная крыльчатка; 6 – диск; 7 – пружины; 8 – чашка Петри;

9 – крышка прибора; 10 – накидные замки; 11 – диски из плексигласа;

12 – клиновидная щель; 13 – разрезное кольцо; 14 – штуцер с диафрагмой;

15 – выводная трубка Струя воздуха приходит через узкую клиновидную щель и с большой скоростью ударяется о влажную поверхность питательной среды. В результате удара находящиеся в воздухе аэрозоли, в том числе содержащие бактерии пылевые частицы и капли, прибиваются к поверхности МПА или элективных сред. Вращение чашки (1 оборот в 1 с) обеспечивает равномерность посева. О количестве проходящего через прибор воздуха судят по показаниям микроманометра, который градуируют заранее. Производительность такого прибора составляет от 20 до 40 л/мин. В зависимости от предполагаемого содержания микроорганизмов в воздухе устанавливают ту или иную скорость его протекания. При обычных анализах общего обсеменения 50 л воздуха пропускают в течение 2 мин. Таким образом, за 1 ч можно засеять около 25 чашек. При большом заражении воздуха экспозиция сокращается до 1 мин., так как на чашке не должно быть больше 300 колоний.

При использовании элективных сред пропускают по 250–300 л воздуха. Опыт проводят в четырех повторностях. Подобные методы наиболее надежны и точны.

Аэрозольный пробоотборник «Флора-100» рассчитан на эксплуатацию при температуре от 0 до +50 С при относительной влажности воздуха – не более 80 %. Объемная скорость отбора пробы – 180 л/мин. Режимы отбора проб – 25, 100, 250 и 2000 л.

Диапазон измеряемых концентраций микроорганизмов – 1–104 КОЕ · м–3. Пробоотборник оформлен в виде переносного портативного прибора, состоящего из корпуса, в котором, смонтированы блок управления на печатных платах, аспиратор и аккумуляторные батареи; и съемной ситовой решетки. Корпус и ситовая решетка выполнены из анодированного алюминиевого сплава. Лицевая панель с органами управления смонтирована на корпусе и герметично закрыта гибкой пластиной. Прибор снабжен съемным электрошнуром с блоком питания.

1.3. Объем пробы воздуха Объем пробы воздуха должен быть достаточным для роста дискретных и пригодных к подсчету колоний на фильтрующей мембране или агаровой пластине. Оптимальным количеством КОЕ, выросших на мембране считается менее 30 и на агаровых пластинах (чашках Петри) – менее 300 колоний. Для импакторов и центрифужных пробоотборников одним из ограничивающих факторов является высыхание поверхности агара при больших объемах проб, а также возможность повреждения целостности агарового слоя (растрескивание). Объем пробы воздуха должен устанавливаться опытным путем, с учетом характеристик используемого пробоотборника и концентрации микроорганизмов в тестируемой зоне.

1.4. Этикетирование проб Этикетирование проб воздуха при пассивной и активной седиментации является условным, так как этикетируются чашки Петри с посевами. На этикетке записывается номер, под которым обозначается станция отбора проб. Подробное описание выполняется в журнале. Оно включает географическую характеристику места исследования, температуру воздуха, возможность антропогенного загрязнения (промышленные предприятия, автомобильные трассы и т.д.), наличие растительности и другие особые примечания.

2. МЕТОДЫ ОТБОРА ПРОБ ВОДЫ

2.1. Общие положения Микробиологическое исследование воды включает санитарно-микробиологический контроль питьевой воды и воды хозяйственно-питьевого назначения централизованного и децентрализованного водоснабжения, научно-исследовательское изучение и мониторинг бактериопланктона морских и континентальных водоемов, контроль качества очищенных сточных вод на различного рода очистных сооружениях, микробиологический режим рыбоводных прудов сельскохозяйственного назначения.

2.1.1. Выбор места (станции) отбора проб Для определения количественных характеристик и качественного состава намечают стационарные станции отбора проб, которые охватывают площадь и вертикальные горизонты. Количество станций определяется площадью и глубиной водоема. При выборе станций руководствуются не только возможностью охватить большую площадь, но и места скопления микроорганизмов:

около берега, в зарослях высших водных растений, в месте выпуска сточных вод разной степени очистки и т.п.

Взятие проб следует производить при устойчивых погодных условиях и только после того, как исследователь будет иметь представление о размерах, конфигурации, глубине и морфометрии водоема.

При отборе проб необходимо учитывать неоднородность потоков в текучих водах, атмосферные осадки и паводки, смывающие в водоемы почву и нечистоты, близость населенных пунктов и промышленных предприятий, резкие колебания температуры и др. Кроме того, распределение микрофлоры по горизонтам очень варьирует, и для характеристики водоема следует брать несколько проб с разных глубин. Начиная с глубины 10–15 см от поверхности, кончая придонными пробами на расстоянии 30 см от дна.

В малых водоемах пробы отбирают с берега, со специальных мостков или гидротехнических сооружений («монахов»), в больших – с лодки. При этом лодка должна или вообще не двигаться, или идти на очень малом ходу. Поэтому команда к остановке дается за несколько метров до приближения к каждой следующей станции. В морях и океанах – с судов батометрами.

Отбору проб на водоемах предшествует не только выбор места взятия пробы (станция), но и подготовка, и транспортировка стерильной посуды и приборов.

Для отбора проб воды используют стеклянные бутылки, флаконы с притертыми пробками, а также батометры различных конструкций, которые доставляют на водоем тщательно завернутыми в бумагу, в которой они стерилизовались.

В случае доставки стерильной посуды к местам работы с помощью транспортных средств она должна быть аккуратно и тщательно упакована в фанерные ящики для предотвращения тряски и боя и перекрыта клеенкой или полиэтиленовой пленкой во избежание проникновения пыли и воды. При подготовке посуды к стерилизации на каждую бутылку или флакон следует наклеить небольшой кусочек лейкопластыря, на котором в момент взятия проб наносят дату и номер взятой пробы.

Взятые пробы должны быть герметично закрыты до анализа, и сохранять их следует при температуре не выше 3–5° С и не более 1–3 ч. Пробы можно сохранять от 4 до 6 ч при температуре 3–5° С в холодильнике.

Если важно определить число живых микроорганизмов в пробе на момент ее отбора, необходимо учитывать возможность размножения клеток в образце во время хранения и транспортировки (феномен известный как «эффект бутылки» и особенно важный для обработки проб морской воды, лишенных природных адсорбирующих поверхностей). Когда пробу морской воды помещают в стерильную посуду, питательные вещества воды сорбируются на внутренней поверхности сосуда, повышая локальную концентрацию субстратов, что становится притягательным для микроорганизмов, которые также сорбируются на стенках и вследствие повышенной концентрации субстратов, начинают быстро размножаться. С другой стороны, условия хранения собранных образцов могут привести к гибели части популяции микроорганизмов, что вызовет снижение общего микробного числа.

Пробы воды, взятые для установления общей численности микроорганизмов, фиксируют формалином из расчета 2–3 капли (0,1 мл) 40%-го раствора на 100 мл воды. Отобранные пробы фиксируют не позднее, чем через 3–4 ч после отбора, а лучше сразу после него. Для фиксации проб обычно используют формалин, предварительно профильтрованный через мембранный фильтр с диаметром пор не более 0,2 мкм.

Склянки с зафиксированными пробами для микробиологических исследований должны быть плотно закрыты притертыми пробками, на которые следует надеть колпачки для предупреждения открывания проб при транспортировке и уменьшения испарения при хранении. В качестве колпачков используют детские резиновые соски, кусочки прозрачной полиэтиленовой пленки, иногда пробки заливают парафином. Хранить пробы следует в прохладном месте, а еще лучше в холодильнике, не допуская их промерзания.

2.1.2. Оборудование для отбора проб воды Для отбора проб воды используются стерильные бутылки, флаконы или колбы, бутылочный батометр, батометры других конструкций, капроновый экран Ильинского.


Бутылки, флаконы или колбы предварительно тщательно моются хромовой смесью, чтобы на стенках не было органических веществ и бактериальных клеток. В горлышко вставляют ватную пробку с марлевой салфеткой. Сверху накладывают салфетку из жесткой бумаги или полиэтилена и завязывают ниткой. Посуду стерилизуют сухим жаром при температуре 150° С в течение 2 ч, при температуре 160° С – 1 ч, при температуре 170° С – 20 мин. или в автоклаве при 1 атм. – 20 мин.

Бутылками, флаконами или колбами можно отбирать пробы с поверхности водоемов, около берега, с мостов или лодки. Для этого бутылку берут в ладонь у горлышка, другой рукой с нее снимают салфетку и вытаскивают пробку. На расстоянии руки от лодки бутылку погружают в воду на глубину 5–10 см. Отбор производят при медленном перемещении лодки у ее носа, чтобы в бутылку не попадала вода, которая соприкасалась с бортами лодки. После наполнения часть воды выливают, и сосуд затыкают той же стерильной пробкой.

Для отбора проб воды с глубины от 0 до 30 м используют бутылочный батометр (рис. 4). Перед отбором пробы в поддон ставят стерильную бутылку, на плечи которой надвигают и закрепляют винтами хомутик. Из бутылки вынимают ватную пробку и на ее место вставляют резиновую настолько прочно, чтобы батометр висел на маленькой веревке и пробка не выскакивала. Предварительно резиновую пробку тщательно обтирают спиртом и обжигают. В таком виде батометр опускают на нужную глубину, резким рывком основной веревки пробку выдергивают из бутылки и через полминуты батометр поднимают на поверхность. Бутылку снимают, верхний слой воды сливают из горлышка и той же ватной пробкой закрывают.

Рис. 4. Батометр для стерильного отбора проб воды: 1 – трос для опускания бутыли; 2 – кольцо для крепления троса; 3 – бечевка, при помощи которой пробка 4 прикрепляется к тросу; 5 – рама батометра; 6 – зажим для закрепления стерильного сосуда при отборе проб воды; 7 – стерильная бутыль вместимостью 0,25–0,5 л; 8 – гнездо утяжеленной рамы батометра Для глубин от 30 см до 1 метра к прибору крепится груз, достаточный для ее погружения. К оплетке бутыли или поддону крепят достаточно прочную, размеченную через каждый метр, веревку, на которой бутыль опускают на нужную глубину. В горлышко бутылки вставляют пробку, к которой крепят вторую, более тонкую веревку той же длины, что и первая веревка. После опускания бутыли на нужную глубину, из нее за веревку выдергивают пробку. Этот пробоотборник достаточно прост и надежен, однако его нельзя использовать на глубинах более 30 м, поскольку из бутылки уже невозможно будет выдернуть пробку. Еще одним недостатком этого прибора является попадание в пробу воды с вышележащих горизонтов при подъеме бутылки. Поэтому после извлечения бутылки с пробой на поверхность, верхний слой воды из нее сливают.

Простейшим приспособлением для отбора пробы воды является флакон, закрытый пробкой с двумя трубочками, одна из которых доходит до дна, другая оканчивается у пробки; трубочки соединены каучуковой трубочкой. К этой трубочке прикреплен тросик (рис. 5). Флакон опускают в воду. По достижении той глубины, с которой должна быть взята проба, дергают за тросик, с его помощью срывают резиновую трубочку. Тогда вода через длинную трубочку начинает поступать в бутылку, вытесняя из нее воздух, через короткую трубочку. Это приспособление используют на небольших глубинах.

–  –  –

Для взятия проб с больших глубин удобен прибор Б.Л. Исаченко со сменным баллоном А.А. Егоровой. Баллон А.А. Егоровой имеет вид большой ампулы емкостью 100–110 см, резиновой трубкой баллон соединен с изогнутой трубочкой, через которую из баллона откачивают воздух. Затем эту трубочку запаивают и стерилизуют. Баллон вставляют в медный никелированный цилиндр, длиной 30,5 см, который в верхней части имеет вырез для изогнутой трубочки.

Около цилиндра с баллоном имеется приспособление, с помощью которого на кончик изогнутой трубочки посылается груз.

Этот груз отбивает кончик трубочки, и тогда вода входит в баллон. Остаток трубочки закрывают стерильной ватой. Баллоны можно заменить большими пробирками с каучуковыми пробками, в которые вставляются отводные трубки (рис. 6).

Для отбора проб воды с глубин более 30 м существуют более сложные специальные приборы, в частности батометры конструкции Зобелла, Родиной, Сорокина. Иногда для этих целей используют химические батометры (рис. 7). Однако по ряду причин их использование нежелательно, так как большинство из них сделаны из металла, и оказывают на бактерий бактерицидное действие. Более приемлемым для этих целей является пластмассовый батометр.

На заданный горизонт батометры опускаются в открытом виде и в него могут попасть посторонние микроорганизмы с других горизонтов. Независимо от материала, батометр необходимо предварительно простерилизовать спиртом. Спирт заливается внутрь батометра, оба клапана его закрывают и он тщательно ополаскивается несколько раз, затем спирт сливают, а батометр до использования хранят закрытым.

Химическими батометрами удобно пользоваться при изучении связи между микроорганизмами и фитопланктоном, при суточных микробиологических исследованиях, при одновременном взятии материала для гидрохимических, микробиологических и гидробиологических исследований не только с одного горизонта, а из одной пробы. Объем батометра должен быть не менее 5 л.

Перед взятием пробы его тщательно промывают прудовой водой.

При проведении комплексных исследований первой берут из батометра пробу на кислород и рН, затем пробу для микробиологических исследований, затем гидрохимических, а вслед за этим – для определения численности фито- и зоопланктона.

Батометр Родиной отличается надежностью и относительной простотой конструкции (рис. 8).

Рис. 7. Пример химического Рис. 8. Батометр Родиной батометра: а – в открытом виде;

б – в закрытом виде Батометр Родиной состоит из металлической оправы и склянки 1 с плоской притертой пробкой, края которой захватывает пластинка с 2–3 крючками 2. Через дужку прибора проходит металлическая трубка 3, соединенная с пластинкой, фиксирующей пробку. Эта трубка имеет внутри пружину, которая закреплена на поверхности пластинки-фиксатора с помощью крючка.

Свободней конец пружины имеет кольцо. К нему привязывается веревка 4. Батометр в нижней части снабжен стаканом с тяжелым металлическим дном 5, обеспечивающим, прибору строго вертикальное положение при погружении. Эвакуация батометра производится при помощи посыльного троса 6, который крепится к дужке прибора. Края стакана и специальный хомутик, располагающийся на «плечах» склянки, обеспечивают надежное положение ее в приборе. При опускании батометра в водоем посыльный трос 6 должен быть натянут, а соединенная с пружиной веревка 4 – свободно провисать. Для заполнения склянки водой эту ве

–  –  –

рез которую пропущена изогнутая стеклянная трубка 3. На наружный конец ее надета резиновая трубка 4, оканчивающаяся стеклянной трубкой 5 с запаянным противоположным концом.

Снаряженную таким образом бутылку стерилизуют в автоклаве, а пробку прикрепляют к ее шейке. После стерилизации бутылки извлекают из автоклава и быстро закрывают резиновыми пробками. При такой подготовке воздух из склянки удаляется на 50– 90 %. Для транспортировки бутылки заворачивают в пакеты из стерильной бумаги. При подготовке к работе бутылки прикрепляют к латунной раме.

При использовании батометра Сорокина откачку воздуха производят после стерилизации в лаборатории, в экспедиционных условиях с помощью насоса.

Все описанные приборы удобны при отборе простых проб.

При взятии средней пробы по разрезу или по всему водоему, а также при отсутствии специальных приборов можно поступить следующим образом: выделить для отбора проб специальное ведро с крышкой; лучше всего взять ведро из пластмассы (достаточно прочное, легкое, не окисляется и не ржавеет; использовать его для других целей нельзя).

Ведро и крышку с внутренней стороны непосредственно перед работой следует протереть ватным тампоном, смоченным спиртом, ополоснуть водой из исследуемого водоема и держать закрытым. Воду из пруда на каждой станции можно отобрать при помощи дюралевого молочного черпака с длинной ручкой, предварительно обжигая его с наружной и внутренней стороны. Сделав на ручке разметку, с помощью такого черпака можно отобрать пробы с глубины до 40 см. После взятия пробы на последней станции всю воду, находящуюся в ведре перемешивают тем же черпаком и набирают в стерильный стеклянный флакон, снабженный сифоном – резиновой пробкой с двумя стеклянными трубками (рис. 5).

При подготовке к стерилизации концы стеклянных трубок соединяют отрезком резинового шланга. К нему привязывают тонкую, но прочную капроновую веревку. На шейку склянки должен быть надет хомутик или кольцо, к которому крепят другую капроновую веревку (опускающую). При опускании стерильной склянки в ведро со смешанной пробой следует дернуть за веревку, фиксирующую резиновый шланг, который при этом соскакивает и склянка заполняется водой через одну из трубок, в то время как через другую трубку выходит воздух. Когда вода заполнит склянку, ее следует вытянуть и быстро сменить сифон стерильной пробкой, находящийся в том же пакете, закрыть колпачком из детской соски или полиэтиленовой пленкой и завязать.

Для отбора проб тонкой поверхностной пленки (бактерионейстона) используют капроновый экран Ильинского. Экран заворачивают в бумагу и стерилизуют в автоклаве при 1 атм. в течении 20 мин. или сухим жаром при 160° С в течение 1 ч. Для отбора проб экран на капроновом лине опускают на поверхность воды и сразу после заполнения водой ячеек поднимают наверх.

Затем, держа одной рукой за линь, другой наклоняют его на угол за одну из оттяжек. Следующую воду собирают в стерильную колбу. Работы с экраном проводят в стерильных резиновых перчатках, предварительно протертых спиртом, при этом избегают касания ими рабочей поверхности экрана. При работе в открытых водах используют один экран несколько раз, в прибрежных – однократно, для отбора проб воды объемом более 18–20 мл применяют несколько экранов.

2.1.3. Объем пробы воды Пробы воды поверхностных водоемов (водохранилищ, проточной речной, озерной, плавательных бассейнов, рекреационных биотопов) отбирают в количестве 500,0 мл.

Пробы воды централизованного водоснабжения (водопроводной) после отчистки и хлорирования отбирают в количестве 500,0 мл.

Воду из крана отбирают двукратно, сразу после открытия крана и после спуска воды в течение 10–15 мин.

Пробы грунтовой и артезианской воды отбирают в количестве 500,0 мл.

Воду кантажную минеральную отбирают в количестве 500,0 мл Воду индивидуального пользования (из графинов, бачков, цистерн) отбирают в количестве всего содержимого небольших емкостей, но не более 500,0 мл.

Объем отобранной сточной жидкости зависит от цели исследования.

Сточные жидкости нативные (до очистки и обеззараживания) отбирают в утренние часы (от 7 до 9) в количестве не менее 10–20 мл.

Сточные жидкости после биологической очистки отбирают в количестве 50,0–500,0 мл во второй половине дня.

Сточные жидкости после обеззараживания отбирают в количестве 100,0–500,0 мл.

2.1.4. Этикетирование проб Отобранную пробу сопровождают документом с указанием цели исследования, даты отбора пробы (год, месяц, число и час); места отбора, особых обстоятельств, имевших место при отборе проб (погодные условия, температура воды, санитарное состояние водоисточника, условия транспортирования и т.д.). Сведения с этикетки переносятся в лабораторный журнал (см. приложение).

2.2. Отбор проб для микробиологического исследования воды рыбоводных прудов Целью исследования является микробиологический режим рыбоводных прудов, выявление роли бактериопланктона в кислородном режиме, минерализации органического вещества (комбикормов, продуктов метаболизма рыб) продукционных процессах, круговорота биогенных элементов.

Выбор станции для отбора проб должен учитывать следующие закономерности:

1. В рыбоводных прудах наблюдается статистически достоверное увеличение численности микрофлоры по продольной оси водоемов и на приближенных мелководных участках, что связано с водотоком в прудах, следовательно, с распределением и осаждением взвешенных частиц. Для пойменных прудов, расположенных в местностях с сильными ветрами постоянного направления число микроорганизмов возрастает в направлении господствующих ветров, а в донных отложениях убывает. Это можно объяснить тем, что с наветренной стороны в результате сильного волнобоя происходит размыв и взмучивание поверхностного слоя грунта и перенос его в воду.

2. При проведении микробиологических исследований на рыбоводных прудах для получения достоверных результатов пробы отбирают по разрезам, а не только вблизи выпуска воды, в центре и у водовыпуска или по выбранному створу.

3. На каждом из разрезов пробы отбирают не менее чем на трех станциях, даже на малых водоемах площадью не более 1 га.

4. При изучении сезонной динамики численности и видового состава бактериопланктона воду следует отбирать из 5–7 точек пруда.

5. На прудах, имеющих выбросы ключей или питающихся водой из артезианских скважин, пробы отбирают не только на нескольких станциях, или по разрезам, а также и в зоне поступления воды.

6. При изучении распределения тех или других микроорганизмов по биотопам пруда следует анализировать материал каждой пробы в отдельности.

7. При исследовании сезонной динамики пробы, отобранные по каждому разрезу можно анализировать как одну среднюю пробу для данного разреза.

8. Для анализов из маточных, нерестовых, выростных и нагульных прудов глубиной до 1 м отбирают пробы воды только с одного горизонта – среднего. Из нагульных и особенно зимовалых прудов, глубина которых значительно больше, а у водовыпуска составляет 2, иногда 3 м и больше отбирают две пробы воды: на глубине 15–20 см от поверхности и придонную – на расстоянии 20–25 см от дна.

9. Для контроля над течением микробиологических процессов и состоянием рыбы в зимний период отбирают несколько проб по вертикали, начиная с глубины 10–15 см подо льдом. Выемку проб осуществляют из прорубей (если пруд покрыт льдом) у водонапуска (в средней части) и водовыпуска.

10. Лучшим временем отбора проб на рыбоводных прудах для получения достоверных результатов следует считать интервал между 8 и 16 ч, так как именно в этот отрезок времени численность микроорганизмов наиболее близка к среднесуточному показателю.

Пробы для микробиологических исследований нельзя отбирать в следующих случаях:

1) непосредственно после сильных ливней и гроз, когда в водоемы поступает большое количество воды со смывом с окружающей территории;

2) сразу же после кормления рыбы или обкоса прудов, так как в этих случаях происходит перемешивание воды и взмучивание ила рыбой или работавшими агрегатами;

3) сразу же после контрольных обловов, сопровождающихся перемешиванием воды, взмучиванием поверхностного слоя донных отложений, а нередко и частичным приспуском воды;

4) после внесения минеральных удобрений и извести, когда, как правило, наблюдается кратковременное снижение численности микроорганизмов.

Выбор фоновой или контрольной станции. При весеннем заполнении прудов водой, контрольной пробой может быть проба воды из реки, канала и другого источника водоснабжения хозяйства. При работе на экспериментальных хозяйствах, как правило, выделяют два пруда, которые будут контрольными в серии опытных водоемов на период планированного эксперимента или в течение всего вегетационного сезона.

При изучении воздействия одного или нескольких факторов на микрофлору прудов одного хозяйства лучше всего использовать группу водоемов с независимым водоснабжением.

Если исследования проводятся в производственных условиях и нет возможности выделить пруды в качестве контрольных, т.е. использовать их без внесения удобрений или с разреженной посадкой рыбы, без кормления и т.д., контрольную пробу отбирают из источника водоснабжения и подвергают ее полному бактериологическому анализу наравне с пробами из опытных прудов.

Если хозяйство, где проводятся исследования, построено так, что пруды расположены каскадно и имеют зависимое водоснабжение, то первый, верхний, водоем считают контрольным, а остальные распределяют так, чтобы нагрузка увеличивалась по каскаду.

При одновременном обследовании нескольких прудов одного хозяйства порядок отбора проб должен строго соблюдаться на каждом из водоемов.

Частота отбора проб воды определяется задачами, стоящими перед исследователем. При изучении сезонно динамики численности бактериопланктона в выростных, нагульных и зимовальных прудах пробы воды отбирают 1–2 раза в месяц через равные промежутки времени в течении всего вегетационного сезона.

Сроки отбора проб в нерестовых и мальковых прудах определяются целями исследований, а также длительностью использования этих водоемов. Отбор проб в прудах этих категорий следует производить с интервалами, не превышающими 3–5 сут.

Если в течении сезона под наблюдением находится группа однотипных, небольших водоемов, то в каждом из них ежемесячно отбирают по одной средней пробе. При этом в прудах, находящихся в одном хозяйстве, пробы отбирают по возможности в один день, а в водоемах, расположенных на значительном расстоянии, с минимальным разрывом во времени. Если под наблюдением находится группа прудов или 1–2 водоема, то пробы в них следует отбирать не реже двух раз в месяц.

При изучении влияния удобрения, известкования, или антипаразитарной обработки выращиваемой рыбы на численность бактериопланктона и активность вызываемых им процессов пробы отбирают перед их внесением (не ранее чем за сутки), после обработки прудов (при удобрении и известковании через сутки, а при внесении специальных медикаментозных средств или химических веществ через несколько часов) и затем последовательно через 1–3 сут.

Пробы, отобранные на прудах и предназначенные для проведения бактериологических посевов следует доставить в лабораторию не позднее чем через 1–3 ч после взятия. В случае транспортировки проб необходимо принять все меры во избежание их загрязнения или другого воздействия на них условий внешней среды. Весной и осенью от места взятия до лаборатории пробы можно доставлять в переносном фанерном ящике с гнездами и плотно прилегающей крышкой, в полиэтиленовом ведре с крышкой или в медицинской бюксе. Летом (в жаркое время) их доставляют в широкогорлом термосе, завернув в мягкую бумагу или вату, чтобы не повредить колбы, в сумке-холодильнике, предварительно зарядив пакеты, или в полиэтиленовом ведре, переложив их аптечными резиновыми пузырями со льдом. Температура в емкостях для транспортировки проб в жаркое время должна быть как можно ближе к 4° С. При транспортировке проб в зимний период для предупреждения замерзания их следует перекладывать аптечными резиновыми пузырями с теплой водой.

2.3. Отбор проб для санитарно-бактериологического анализа питьевой воды Цель исследования: текущий санитарный надзор или по особым показаниям (рекомендации санитарно-эпидемиологической службы, сигналы, поступающие от населения об изменении органолептических качеств воды, и т.п.).

Место и время отбора. Место и время отбора пробы определяют в зависимости от цели анализа в наиболее характерных точках водопроводной сети: ближайших к насосной станции, наиболее удаленных от неё, наиболее возвышенных, в тупиках, в точках, количество воды в которых вызывает сомнение, а также из кранов, колонок городского и индивидуального пользования.

Для отбора проб воды используют стерильные флаконы вместимостью 0,5 л с притертой каучуковой или корковой пробкой.

Пробы воды периферической водопроводной сети отбирают в периоды наибольшего расхода воды при соблюдении правил стерильности, после предварительной стерилизации кранов обжиганием пламенем горящего тампона, смоченного спиртом, и последующего спуска воды в течение 10–15 мин. при полностью открытом кране. Бумажный пакет или колпачок с флакона снимают вместе с пробкой непосредственно перед отбором пробы, не касаясь пробки руками. Наполняют флаконы с таким расчетом, чтобы при транспортировании не замочить пробку. Объем отбираемой пробы – 500 мл. Наполненные флаконы закрывают притертыми каучуковыми или корковыми пробками и стерильными бумажными колпачками, которые обвязывают ниткой и бечевкой.

Пробы хлорированной водопроводной воды (с аммонизацией или без нее) отбирают во флаконы с дехлоратором: во флакон, предназначенный для отбора 500 мл воды, до стерилизации вносят 10 мг серноватистокислого натрия.

Проба должна быть исследована не позже чем через 2 ч после её отбора. При невозможности выполнения этих условий анализ допускается проводить не позднее 6 ч после отбора пробы, сохраняя при этом пробу при температуре от 1 до 5° С.

При невозможности исследовать пробы на месте допускается их транспортировка. При этом посуда с приборами должна быть упакована в сумки-холодильники или в ящики с теплоизолирующей прокладкой. Температуру от 1 до 5° С необходимо поддерживать, применяя резиновые или пластмассовые мешки, наполненные летом льдом, а зимой теплой водой. Необходимо избегать при транспортировании резких толчков, которые могут привести к намоканию пробок.

2.4. Отбор проб для полевого санитарно-микробиологического анализа Цель исследования: контроль качества воды водоисточников хозяйственно-питьевого назначения в системе централизованного и децентрализованного водоснабжения (колодцев, каптажей, родников и т.д.).

Место и время отбора проб. Место отбора проб определяют в зависимости от источника водопользования и сезона года. При контроле качества воды в системе централизованного водоснабжения пробу отбирают после предварительной стерилизации кранов обжиганием и последующего спуска воды в течение 1– 10 мин. при полностью открытом кране, если отсутствует механизированная подача воды и сливные трубы, пробы отбирают батометром с места децентрализованного водоснабжения. Воду для санитарно-бактериологического исследования отбирают в количестве 500 мл в бутылки или флаконы, предварительно простерилизованные в бумажных пакетах, с ватно-марлевой пробкой. К горлышку бутылки привязывают пакетик с завернутой в него запасной пробкой. Пробы воды из открытых водоемов, бассейнов, баков и т.п. отбирают с глубины 10–15 см, а при малой глубине – не менее 10–15 см от дна.

Пробы воды отбирают в стерильную посуду, стерильными батометрами, руки перед отбором обеззараживают. Посуду открывают непосредственно перед отбором, удаляя пробку вместе со стерильным колпачком. Посуду с отобранной пробой немедленно после отбора закрывают стерильным колпачком. Посуду с пробами воды подлежащими транспортированию, закрывают пробками, не впитывающими воду (например, притертыми стеклянными, резиновыми, ватными, обернутыми фольгой и т.п.).

Если отбирают воду после обеззараживания, необходимо нейтрализовать основные количества дезинфектанта. При отборе хлорированной воды в посуду до её стерилизации вносят серноватистокислый натрий из расчета 8–10 мг на 500 мл пробы.

Проба воды должна быть исследована в течение 2 ч после её отбора. Допускается хранение пробы и её транспортирование не более 6 ч при температуре 1–10° С. При отсутствии холодильных приборов (холодильников, сумок-холодильников, термоконтейнеров и т.д.) пробы воды должны сохранять при температуре, которую вода имела во время отбора, предохраняя от замерзания, действия прямых солнечных лучей, перегрева и т.п.

2.5. Отбор проб (кернов) морского и ледникового льда, льда водоемов и атмосферных осадков Отбор проб морского льда, а также льда водоемов и водотоков производят на ровном участке поверхности льда очищенном от поверхностного снежного покрова, ручным кольцевым буром.

После отбора измеряют длину полученного керна льда. Керн помещают в тройной полиэтиленовый мешок или цилиндрический контейнер с винтовой крышкой, изготовленный из полимерного материала (допускается применять металлический контейнер), контейнер (мешок) с керном маркируют и хранят при отрицательной температуре до начала анализа. В случае необходимости определения химического состава различных форм льда, керн непосредственно на месте отбора должен быть разделен на образцы, соответствующие формам льда. Каждый образец упаковывают и маркируют отдельно.

Контейнеры и мешки для хранения проб льда перед использованием обрабатывают аммиачным раствором трилона Б и тщательно промывают дистиллированной водой.

Объем отбираемой пробы, необходимой для выполнения анализа, зависит от перечня определяемых компонентов и применяемых методов анализа.

Отбор проб морского льда, а также льда водоемов и водотоков для определения органических загрязняющих веществ выполняют кольцевым буром. Все пробоотборное оборудование и емкости для хранения проб льда непосредственно перед отбором обрабатывают соответствующими растворителями, используемыми для экстракции загрязняющих веществ во время последующего определения их химического состава.

Металлические скребки и кольцевой бур, применяемые для удаления со льда поверхностного снежного покрова и отбора проб льда, хранят в чистых полиэтиленовых мешках в условиях, не допускающих загрязнения их поверхности маслами и топливом.

Хранение и транспортирование проб осуществляют в ящиках и контейнерах из нержавеющей стали с герметически закрывающейся крышкой.

Отбор проб морского льда, исключающий таяние проб. Для хранения и транспортирования отобранных и упакованных проб используют специальные контейнеры и транспортировочные ящики с откидной крышкой и внутренним покрытием из полимерного материала, обеспечивающие сохранность проб и предотвращающее их загрязнение.

На этикетке указывается место и дата отбора проб, цель исследования, особые обстоятельства. Сведения с этикеток переносятся в лабораторный журнал.

Отбор проб атмосферных осадков. Пробы отбирают на метеостанциях или специально оборудованных постах, которые являются представительными для данного района. В зависимости от цели анализа отбора проб могут размещаться как в зоне влияния отдельных источников загрязнения или их групп, так и вне ее.

Отбирают точечную или объединенную пробу атмосферных осадков. Точечную пробу атмосферных осадков отбирают при отдельном дожде или снегопаде (интервал времени при выпадении не более 1ч). Объединенная проба атмосферных осадков отбирается за определенный период времени – месяц, декаду, неделю, сутки и характеризует среднее содержание определяемых компонентов за этот период времени.

Отбор проб производят только во время выпадения атмосферных осадков в специально обработанные сборные емкости на высоте 2 м соответствующей стандартному осадкомеру Третьякова.

На этикетке пробы описываются цель исследования, место и дата отбора, климатические и другие особенности в момент отбора. Сведения с этикеток переносятся в лабораторный журнал.

Транспортирование проб в лабораторию для проведения анализа производят в оптимально короткие сроки после отбора проб.

При этом применяют специальные ящики, обеспечивающие сохранность и чистоту проб.

2.6. Отбор проб донных отложений Донные отложения аккумулируют значительную часть органических веществ и могут быть источником пополнения биогенных элементов. Разнообразные по механическому и химическому составу и различающиеся по мощности залегания они влияют на солевой состав и газовый режим воды. Кроме того, донные отложения прудов и небольших озер являются естественной средой обитания многих бентических организмов, которыми питаются рыбы.

2.6.1. Оборудование для отбора проб донных отложений Пробы донных отложений обычно отбирают с поверхности с помощью скребков или ковшей, однако такие способы не позволяют уберечь данные пробы от загрязнения посторонней микрофлорой. С соблюдением асептики можно отбирать пробы-керны, которые затем в лаборатории в стерильных условиях делят в вертикальном направлении, что позволяет прослеживать динамику осадков по горизонтали. Наиболее точно отбирают пробы морских осадков с использованием миниатюрных двух-трехместных подводных лодок, которые погружаются на глубину до 3 км, где с помощью манипуляторов и специальных сверл отбирают пробы осадков в точно локализованном участке (особенно это важно в местах подводных термальных источников или «черных курильщиков»). Использование мини-подлодок позволяет также отбирать пробы, обрабатывать их нужным образом на месте отбора (например, вводить радиоизотопы) и оставлять на месте для инкубации с последующим подъемом на поверхность для анализов.



Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |
 
Похожие работы:

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ИНСТИТУТ БИОЛОГИИ КАФЕДРА БОТАНИКИ, БИОТЕХНОЛОГИИ И ЛАНДШАФТНОЙ АРХИТЕКТУРЫ Воронова О.Г. ИСТОРИЯ И МЕТОДОЛОГИЯ БИОЛОГИИ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов направления 020400.68 Биология (очная форма обучения) Тюменский государственный университет Воронова О.Г. ИСТОРИЯ И МЕТОДОЛОГИЯ...»

«МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ РОССИЙСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ – МСХА имени К.А. Тимирязева А.В.Смиряев, А.В.Исачкин, Л.К.Панкина МОДЕЛИРОВАНИЕ В БИОЛОГИИ И СЕЛЬСКОМ ХОЗЯЙСТВЕ Учебное пособие Издательство РГАУ-МСХА Москва 2015 г. УДК 57.001.57+33.001.57 ББК 28.03яб С50 Рецензенты: доктор физ.-мат. наук профессор кафедры биофизики биологического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова, зав. Сектором информатики и биофизики сложных систем Г.Ю. Ризниченко;...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт биологии Кафедра ботаники, биотехнологии и ландшафтной архитектуры Боме Н.А. СЕЛЕКЦИЯ ДЕКОРАТИВНЫХ РАСТЕНИЙ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов по направлению подготовки 35.03.10 Ландшафтная архитектура (уровень бакалавриата), профиль подготовки «Декоративное...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт Биологии Кафедра ботаники, биотехнологии и ландшафтной архитектуры Мелентьева Алла Анатольевна БИОЛОГИЯ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов 28.03.01. направления «Нанотехнологии и микросистемная техника»; форма обучения – очная Тюменский государственный университет...»

«САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ ГУМАНИТАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ ПРОФСОЮЗОВ Материалы XI Всероссийской научно-практической конференции 19 февраля 2015 года Рекомендовано к публикации редакционно-издательским советом СПбГУП Санкт-Петербург ББК 75 Ф48 Составители: М. М. Бобров, почетный заведующий кафедрой физического воспитания СПбГУП, профессор, заслуженный тренер СССР, заслуженный работник физической культуры РФ; А. С. Радченко, профессор кафедры физического воспитания СПбГУП, доктор биологических наук; И. В....»

«Гарант дисциплины: Янтурин С.И. доктор биологических наук, профессор кафедры экологии Сибайского института (филиал) ФГБОУ ВПО «Башкирский государственный университет»Рабочую программу дисциплины осуществляют: Лекции и практические занятия к.б.н, доцент Ягафарова Г.А.Рецензенты: И.Н. Семенова доктор биологических наук, доцент кафедры экологии Сибайского института (филиала) БашГУ; Р.Ф. Хасанова кандидат биологических наук, зав. лаборатории «Экология и рациональное природопользование» ГАНУ ИРИ...»

«Аннотация к рабочей программе по предмету «биология» на 2014–2015 учебный год 6 класс (индивидуальное обучение) Цель рабочей программы – создание условий для планирования, организации и управления образовательным процессом по предмету биология к разделу «Растения. Бактерии. Грибы. Лишайники».Рабочая программа включает следующие разделы: Раздел 1. Пояснительную записку, в которой конкретизируются общие цели общего образования с учетом специфики учебного предмета. Рабочая программа составлена на...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт биологии Кафедра ботаники, биотехнологии и ландшафтной архитектуры Боме Н.А.БЕЗОПАСНОСТЬ И БИОЛОГИЧЕСКИЕ РИСКИ ТРАНСГЕННЫХ РАСТЕНИЙ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов по направлению подготовки 020400.68 Биология, форма обучения очная Тюменский государственный...»

«РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Институт биологии Кафедра анатомии и физиологии человека и животных Соловьев В.С. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов направления 020400.68 Биология; магистерская программа: «Физиология человека и животных». Форма обучения – очная Тюменский...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт биологии Кафедра экологии и генетики О.Н. Жигилева ОСНОВЫ ЭКОЛОГИИ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов по направлению подготовки 42.03.02 Журналистика (уровень бакалавриата), профили подготовки «Печать», «Телевизионная журналистика», «Конвергентная журналистика»,...»

«Пояснительная записка Рабочая программа по биологии для 8 класса составлена на основе: 1.Федерального компонента государственного образовательного стандарта среднего (полного) общего образования.М.,2004 2. Примерной программы среднего (полного) общего образования на профильном уровне по биологии. М., 2004г.3.Программа курса и тематического планирования к учебнику А.Г.Драгомилов, Р.Д.Маш, «Биология. Человек» 8 класс. Москва. Издательский центр «Вентана-Граф», 2012г. Рабочая программа...»

«Аннотация к рабочей программе по биологии 5 класс 1. Рабочая программа по биологии для 5 класса составлена на основе:-программы по биологии для 5–9 классов авторов: И.Н. Пономарёвой, В.С. Кучменко, О.А. Корниловой, А.Г. Драгомилова, Т.С. Суховой (Москва, Издательский центр Вентана-Граф, 2012) Методических рекомендаций по преподаванию биологии на 2015-2016учебный год.Положения о рабочих программах МОУ «Сыртинская школа». Всего часов на изучение программы -34 ч Количество часов в неделю – 1 ч....»

«РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Институт биологии Кафедра экологии и генетики О.В. Трофимов МОЛЕКУЛЯРНАЯ БИОЛОГИЯ И МОЛЕКУЛЯРНАЯ ГЕНЕТИКА Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов специальности 020501 – Биоинженерия и биоинформатика, очной формы обучения Тюменский государственный университет Трофимов О.В....»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт биологии Кафедра зоологии и эволюционной экологии животных А.Г. Селюков ЗООЛОГИЯ ПОЗВОНОЧНЫХ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов по направлению подготовки 06.03.01 – Биология (уровень бакалавриата), форма обучения очная Тюменский государственный университет Селюков...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт биологии Кафедра анатомии и физиологии человека и животных Лепунова О.Н. МОЛЕКУЛЯРНАЯ БИОЛОГИЯ ВИРУСОВ И ДРУГИХ ВНУТРИКЛЕТОЧНЫХ ПАРАЗИТОВ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов 06.03.01 направления «Биология», профиль: биохимия; форма обучения – очная Тюменский...»

«Пояснительная записка. Современные требования к учебному процессу ориентируют учителя на проверку знаний, умений, навыков через деятельность учащихся, В период все большего отхода от информационной модели обучения к деятельностной и личностной моделям, от школы памяти к школе мышления и действия, остро стоит вопрос о методических пособиях, помогающих организовать учебный процесс в этом направлении. Лабораторная работа может быть определена как деятельность, направленная на применение,...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ» Институт биологии Кафедра зоологии и эволюционной экологии животных М.Ю. Лупинос ОРНИТОЛОГИЯ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов по направлению подготовки 06.03.01 – Биология (уровень бакалавриата), профили подготовки «Зоология», форма обучения очная Тюменский государственный...»

«РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Институт биологии Кафедра анатомии и физиологии человека и животных Соловьев В.С. АДАПТАЦИЯ И ПАТОЛОГИЯ СТОРОНЫ ОДНОГО ПРИСПОСОБИТЕЛЬНОГО ПРОЦЕССА Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов направления 020400.68 Биология; магистерская программа: «Физиология человека и животных». Форма...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Институт биологии Кафедра ботаники, биотехнологии и ландшафтной архитектуры С.П. Арефьев ТАКСАЦИЯ Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов направления 35.03.10 Ландшафтная архитектура очной формы обучения профиля Декоративное растениеводство и питомники Тюменский государственный университет...»

«РОССИЙСКАЯ ФЕДЕРАЦИЯ МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования ТЮМЕНСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСИТЕТ Институт биологии Кафедра анатомии и физиологии человека и животных Загайнова Алла Борисовна Физиология экстремальных состояний Учебно-методический комплекс. Рабочая программа для студентов направления 020400.68 Биология; магистерская программа: «Физиология человека и животных». Форма обучения – очная...»





Загрузка...




 
2016 www.metodichka.x-pdf.ru - «Бесплатная электронная библиотека - Методички, методические указания, пособия»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.